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本文作者:李洪才(編譯)
生物膜的形成會造成工業(yè)、環(huán)境和健康問題,通常會導(dǎo)致操作故障和產(chǎn)品質(zhì)量降低。紙廠的過程水中富含營養(yǎng)物質(zhì),溫度25~45℃,是微生物迅速生長的合適介質(zhì)。以廢紙為原料時(shí),雖然添加劑和水也可能含有少量的污染物質(zhì),但大多數(shù)微生物是隨原料一起進(jìn)入系統(tǒng)的。在生產(chǎn)過程中,水中細(xì)菌類微生物獲得了理想的生存條件,不可避免地造成大量細(xì)菌生長。由細(xì)菌產(chǎn)生的揮發(fā)性物質(zhì)(如有機(jī)酸、硫化物和胺類化合物)和生物膜的形成會產(chǎn)生難聞的氣味和/或引起產(chǎn)品質(zhì)量問題。另外,隨著廢紙用量的增加和水循環(huán)系統(tǒng)的封閉(均能導(dǎo)致有機(jī)物負(fù)荷增加和水回路溫度升高),這些問題會使原本已經(jīng)開始惡化的水系統(tǒng)變得更為嚴(yán)重。
通常而言,生物膜可視為包裹于自產(chǎn)聚合物基體內(nèi)并黏附在惰性或活性表面的組織化的細(xì)菌群落。生物膜所能承受的殺菌劑濃度是殺死同種浮游細(xì)菌所需濃度的10~100倍,因此生物膜極難根除。出于各種目的,如保護(hù)原料、填料,阻止生物膜沉積和臭味形成,或避免設(shè)備腐蝕,通常會在各個(gè)工藝部位使用殺菌劑,如氯、溴、碘、戊二醛及其他物質(zhì)。但是,有些微生物會對殺菌劑產(chǎn)生抗藥性,這就需要研發(fā)新的微生物控制劑。另外,殺菌劑有時(shí)無法滲入生物膜并將其去除。而且,大多數(shù)抗菌劑對環(huán)境有害,可能成為水和環(huán)境污染問題的潛在來源。阻止微生物淤積的方案應(yīng)當(dāng)對環(huán)境友好,應(yīng)阻止微生物與表面接觸和/或阻止群生微生物積累到可能會產(chǎn)生問題的水平,方案之一是分散劑的使用。
分散劑可作為一種單一添加劑用于過程水中,以阻止生物膜的形成,也可與微生物敏感型原料的殺菌劑處理配合使用。分散劑并不是都能殺死或抑制細(xì)菌的生長,盡管一些分散劑對能形成生物膜的細(xì)菌表現(xiàn)出選擇性抑制作用。由于這一原因,不應(yīng)該僅僅依靠細(xì)菌數(shù)量來確定分散劑最佳用量和評估它們的作用效果。分散劑可通過降低水滲透阻力、增加水分留著或通過增加起泡性影響紙張的化學(xué)性質(zhì)。用于生物膜控制系統(tǒng)的分散劑也能作用于其他的非生物膜沉積物,因此使用這些分散劑時(shí)應(yīng)該考慮其對整個(gè)造紙過程的影響。殺菌劑的另一種選擇是使用酶處理技術(shù)。酶可以通過4種不同方式影響微生物的集群和黏附:①酶會作用于沉積微生物的膠黏物,從而預(yù)防沉淀現(xiàn)象;②酶可降解生物膜基質(zhì)(通過增生形成)上的聚合物和沉積的微生物;③酶可催化表面防污化合物的釋放,這些化合物可能有毒也可能沒毒,但它們比傳統(tǒng)殺菌劑更不穩(wěn)定,應(yīng)該能夠預(yù)防有害化學(xué)品的生物富集問題;④表面集群過程中微生物細(xì)胞間的聯(lián)系可能被特定的酶所阻止。
開發(fā)用于造紙過程的有效酶產(chǎn)品主要有2種方法:①鑒定生物膜中存在的多糖,并尋找可降解它們的特定酶;②鑒定不同酶產(chǎn)品中的活性物質(zhì),評估它們對生物膜的影響。酶模型反應(yīng)的專一性使第二種方法的技術(shù)較為復(fù)雜,增加了鑒定酶能否有效防止所有種類生物膜形成的困難。因此,包含幾種酶的配方似乎成為生物膜控制方案成功的關(guān)鍵。第二種方法還未在公開報(bào)道的研究中進(jìn)行過嘗試,關(guān)于專一性酶對造紙過程中生物膜的影響的研究較少。已經(jīng)有人對果聚糖水解酶和Darazyme的系列產(chǎn)品進(jìn)行過研究,Darazyme由GraceDearborn團(tuán)隊(duì)研發(fā),根據(jù)生物膜化合物的初步鑒定,隨后運(yùn)用一種酶或有針對性挑選的酶混合物來降解已鑒定的多糖。本研究著重于第二種方法,對比了17種商品非專一性酶產(chǎn)品對生物膜的預(yù)防和降解能力,其中生物膜由紙廠分離出的細(xì)菌形成。
1實(shí) 驗(yàn)
1.1 酶
評價(jià)了不是專門為生物膜處理而開發(fā)的17種商品酶產(chǎn)品(來自NovozymesA/S,Krogshoejvej36,DK-2880Bagsvaerd,丹麥)對生物膜的影響。表1為17種酶產(chǎn)品的主要活性。
1.2 實(shí)驗(yàn)設(shè)備
使用2種連續(xù)-流動(dòng)生物反應(yīng)器研究了酶對生物膜形成的影響,生物反應(yīng)器的容量為300mL(B300)和10L(B10)。這種設(shè)計(jì)旨在讓生物膜在試樣上生長,這是對1982年發(fā)明的實(shí)驗(yàn)室規(guī)模Pedersen設(shè)備的改進(jìn)。槽的入口通過硅管(B300)或PVC管(B10)與蠕動(dòng)泵和過程水槽相連,出口循環(huán)至槽子(見圖1)。每個(gè)流動(dòng)室包含10個(gè)PVC試樣,間隔為5mm。回路中液體的總?cè)萘糠謩e為300mL和10L。用離心泵輸送這些液體,流速為0.29L/s。新鮮過程水從進(jìn)料槽連續(xù)泵入攪拌槽(B300:50mL/d;B10:250mL/d)。通過排出攪拌槽的過量過程水,而使過程水的總體積保持不變。通過試樣槽的水流為0.10L/s,以此保持湍流狀態(tài)。因?yàn)榱黧w動(dòng)力學(xué)條件顯著影響著生物膜的形成,而且紙廠的流體動(dòng)力學(xué)條件很難在實(shí)驗(yàn)室規(guī)模中再現(xiàn),因此分別在層流和湍流2種動(dòng)力學(xué)條件下研究了酶對生物膜形成的影響,從而可以通過與對照實(shí)驗(yàn)的比較確定每種處理對生物膜形成的影響。
1.3 實(shí)驗(yàn)流程
1.3.1 實(shí)驗(yàn)室預(yù)實(shí)驗(yàn)(B300)
實(shí)驗(yàn)開始前,用除垢劑和乙醇將生物反應(yīng)器洗凈,再用無菌蒸餾水清洗。用丙酮和乙醇對試樣進(jìn)行脫酯和殺菌處理后,用無菌蒸餾水洗滌,置于流動(dòng)室內(nèi)。向生物反應(yīng)器內(nèi)接種過程水中出現(xiàn)的菌群,過程水取自某個(gè)以100%廢紙(混合廢紙,產(chǎn)品為紙板)為原料的紙廠的網(wǎng)部成形區(qū)(工廠1)。實(shí)驗(yàn)在pH值6.8~7.0、30℃溫度下進(jìn)行。研究了17種酶混合物。所有實(shí)驗(yàn)中商品酶制劑用量均為0.1%。用B300反應(yīng)器進(jìn)行了4天多的實(shí)驗(yàn),每24h打開流動(dòng)室取出2個(gè)試樣。一個(gè)試樣用于測定生物膜的形成量,以105℃下干燥6h后的絕干質(zhì)量(mg/m2)為基準(zhǔn)。另一個(gè)試樣用于測定試樣每單位面積上的菌落形成單位數(shù)量Ns(CFU/cm2)。后一種測定中,試樣用無菌鉗移出,用9mL無菌生理鹽水洗滌以去除輕微黏附的細(xì)胞和多余的水分。用無菌棉絨棒在每個(gè)試樣的一側(cè)擦除生物膜,轉(zhuǎn)移到含一定量無菌生理鹽水的小瓶中。搖晃懸浮液(20s)以分散細(xì)胞。然后對所得的每個(gè)樣品進(jìn)行一系列稀釋,涂在平板計(jì)數(shù)瓊脂上。平板在30℃下培養(yǎng)48h。然后測定每平方厘米上形成的菌落形成單位數(shù)量。在相同的時(shí)間間隔內(nèi),在生物反應(yīng)器的水介質(zhì)中無菌取樣,并測定每毫升的菌落形成單位數(shù)量Nv(CFU/mL)。在這些預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果中選擇3種處理方法進(jìn)一步在B10L反應(yīng)器中進(jìn)行研究。
1.3.2 實(shí)驗(yàn)室實(shí)驗(yàn)(B10)
進(jìn)行了4天多的實(shí)驗(yàn),每24h取一次水樣和試樣,根據(jù)B300實(shí)驗(yàn)中的方法通過計(jì)數(shù)和稱量質(zhì)量測定試樣上的生物膜形成量。實(shí)驗(yàn)采用工廠1中的過程水。這種過程水富含纖維、細(xì)小纖維和填料,取自網(wǎng)部成形區(qū),并在15℃下貯存。在用于B10L實(shí)驗(yàn)前,過程水依次用1mm、600m、400m、200m和63m過濾器過濾,類似于工廠中使用多盤過濾處理獲得澄清水。
由試樣上菌落形成單位數(shù)量總數(shù)(A)和與試樣接觸的菌落形成單位數(shù)量總數(shù)(C)的比值計(jì)算集群比(CR),如公式(1)所示。后者(C)被定義為介質(zhì)中的菌落形成單位數(shù)量總數(shù)(B)和試樣上菌落形成單位數(shù)量總數(shù)(A)之和,如公式(2)所示。A和B根據(jù)公式(3)和公式(4)確定,其中CS為試樣表面積(cm2),TVL是反應(yīng)器內(nèi)液體的總體積(mL)。采用這種方法,不同初始條件下的實(shí)驗(yàn)可以進(jìn)行比較。
CR(%)=AC×100%?。?)C=A+B(2)A=Ns(CFU/cm2)×CS?。?)B=Nv(CFU/mL)×TLV?。?)最后,只選擇一種商品酶產(chǎn)品進(jìn)行進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)。首先在B10反應(yīng)器中進(jìn)行10天以上的實(shí)驗(yàn)。為確保細(xì)菌數(shù)量在整個(gè)實(shí)驗(yàn)過程中保持恒定,每24h對介質(zhì)中的細(xì)菌進(jìn)行一次計(jì)數(shù),實(shí)驗(yàn)測得過程水中的細(xì)菌濃度保持在106~107CFU/mL。通過測定沉積在試樣上的生物膜絕干質(zhì)量,每24h評估一次生物膜的積累情況。
1.3.3 中試回路試驗(yàn)
為確定對阻止生物膜形成起主要作用的有效成分,還研究了2種商品酶產(chǎn)品,其包含從17種商品酶產(chǎn)品中挑選出的最有效酶產(chǎn)品。此組試驗(yàn)在中試回路中進(jìn)行,中試回路模擬了一個(gè)紙廠內(nèi)的過程水回路并考慮到了新鮮水的加入和多余水的去除。
中試回路包括2個(gè)由NewBrunswickScientific公司(USA)制造的生物反應(yīng)器BioFlo3000,其中1個(gè)用于測試處理效果,另一個(gè)用于對比,使細(xì)菌在一個(gè)可控環(huán)境下生長:溫度45℃,pH值7,溶解氧高達(dá)20%,湍流狀態(tài)(雷諾數(shù)>2000)。將高密度聚丙烯試樣浸入每個(gè)反應(yīng)器中,以便形成沉淀物。試驗(yàn)采用的過程水取自以100%廢紙為原料生產(chǎn)書寫和印刷紙的紙廠(工廠2)。同樣,這些水取自網(wǎng)部成形區(qū)并在15℃下貯存。在用于中試試驗(yàn)之前,過程水按B10L實(shí)驗(yàn)所述流程進(jìn)行過濾。
為測試酶處理對防止生物膜形成的能力,從試驗(yàn)開始到結(jié)束的10天內(nèi)連續(xù)添加酶使其濃度保持在恒定質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%。每天通過干燥-再水合薄膜法(Petrifilm3MTM)測定水中好氧細(xì)菌的總?cè)郝鋽?shù)。計(jì)數(shù)結(jié)果以菌落形成單位數(shù)量(CFU/mL)表示。在試驗(yàn)的最后,測定試樣上形成的生物膜總絕干質(zhì)量。
為排除酶產(chǎn)品中非酶成分的影響,用工廠2中的過程水在干凈的回路中進(jìn)行變性酶試驗(yàn)。酶在121℃下加熱30min后失活。試驗(yàn)過程中連續(xù)加入失活酶以保持恒定質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%,并與對比試驗(yàn)(無酶)中生物膜的形成進(jìn)行了對比。在干凈回路中,采用不同用量的最佳酶產(chǎn)品進(jìn)行了試驗(yàn)。在3個(gè)生物反應(yīng)器中連續(xù)進(jìn)行,并向生物反應(yīng)器中加入工廠2的過程水。測試了酶在3個(gè)不同的質(zhì)量分?jǐn)?shù)(0.01%、0.001%和0.0001%)下的情況。第4個(gè)反應(yīng)器用于對照試驗(yàn)(無酶處理)。
2結(jié) 果
2.1 實(shí)驗(yàn)室預(yù)實(shí)驗(yàn)
表1為酶對生物膜形成的影響(定性)。測試的17種酶中,PectinexSmash對活性菌落吸附于試樣和生物膜形成的預(yù)防效果最佳。ViscozymeL、Pulpzyme、Terminox和Bio-feedBetaL的效果次之。雖然用Novozyme863h處理時(shí),試樣上測得的菌落形成單位數(shù)量相當(dāng)少,但對生物膜的形成無阻止效果,這在意料之外。因此,選擇Novozyme863h、PectinexSmash和ViscozymeL進(jìn)行進(jìn)一步研究。
2.2 實(shí)驗(yàn)室實(shí)驗(yàn)(B10)
所選酶產(chǎn)品在B10實(shí)驗(yàn)中的結(jié)果如圖2所示。圖2顯示了介質(zhì)中的菌落形成單位數(shù)量(CFU/mL)、試樣上單位面積上的活菌數(shù)量(CFU/cm2)、試樣上的生物膜絕干質(zhì)量和集群比。通過沉積在試樣上的生物膜的絕干質(zhì)量增加值和集群比來評估生物膜的形成。絕干質(zhì)量的增加是由細(xì)菌集群和胞外多糖(EPS)的生成引起的。集群比的增大表明了生物膜的形成。由圖2可知,隨著反應(yīng)時(shí)間的增加,酶的添加沒有改變介質(zhì)內(nèi)每毫升中的菌落形成單位值,這個(gè)值在所有的實(shí)驗(yàn)中都保持恒定,并與對照樣品的測定值相似。這表明,所測試的酶制劑沒有所希望的殺菌效果。
當(dāng)不添加酶時(shí)(對照實(shí)驗(yàn)),試樣上的菌落形成單位數(shù)量和試樣上的生物膜絕干質(zhì)量都增加了,然而,介質(zhì)中菌落形成單位數(shù)量基本穩(wěn)定。這表明,細(xì)菌群集于試樣表面并生成生物膜。實(shí)際上,24h后生物膜就已經(jīng)形成,且隨著實(shí)驗(yàn)的進(jìn)行而增加。48h后集群比迅速增加,96h后集群比接近100%,這說明試樣生物膜上的細(xì)菌幾乎都是活的。當(dāng)使用酶處理時(shí),在開始的24h,試樣上每平方厘米內(nèi)的活性菌落形成單位數(shù)量有所增加,其值比對照實(shí)驗(yàn)中得到的結(jié)果更高。這個(gè)意想不到的效果與其他研究人員的觀察結(jié)果一致,他們已經(jīng)證明,鹽類、消毒水或其他化合物、其他細(xì)菌能增加細(xì)菌的黏附作用,甚至生物膜的熟化。然而,初期增長過后,每平方厘米上的活性菌落形成單位數(shù)量保持不變(見圖2中Novozyme863和PectinexSmash的結(jié)果);72h后甚至稍有下降(ViscozymeL的情況)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),酶處理實(shí)驗(yàn)中集群比保持在20%以下,且細(xì)菌在試樣表面上群集或增長的最終值比對照實(shí)驗(yàn)還低。Novozyme863和ViscozymeL對沉積在試樣上的生物膜絕干質(zhì)量的影響比PectinexSmash的影響明顯要小。Novozyme863和ViscozymeL的添加不會阻止有機(jī)物在試樣上的積累,盡管它們限制了有機(jī)物的積累,且最終值比對照實(shí)驗(yàn)最終值的1/2還少。然而,PectinexSmash的添加能阻止有機(jī)物在試樣上的積累,其質(zhì)量保持在0.2mg/cm2以下。此外,在整個(gè)實(shí)驗(yàn)過程中集群比都較低,表明酶處理通過限制集群在試樣表面的細(xì)菌數(shù)量和減少試樣上生物質(zhì)的生成來減少試樣表面的生物膜的總量。因此,選擇PectinexSmash繼續(xù)進(jìn)行中試回路試驗(yàn)研究。
2.3 中試回路試驗(yàn)
在中試回路試驗(yàn)中,所有情況下水中的細(xì)菌含量均保持在2.3×106~7×107之間。未進(jìn)行酶處理時(shí),試驗(yàn)72h后肉眼就可明顯觀察到試樣表面形成的生物膜。添加PectinexSmash時(shí)生物反應(yīng)器中試樣上沉積的生物膜絕干質(zhì)量為無酶處理時(shí)的1/4~1/3(見圖3)。因此湍流條件下,在干凈回路中添加PectinexSmash能顯著限制生物反應(yīng)器中聚丙烯試樣上生物膜的生成。
2.4 失活PectinexSmash試驗(yàn)
在失活PectinexSmash試驗(yàn)中,水中的細(xì)菌總數(shù)變化不明顯(107~108CFU/mL)。使用失活PectinexSmash處理和無任何處理時(shí),未觀察到生物反應(yīng)器中試樣上沉積的生物膜絕干質(zhì)量有明顯差異(260h后測得試樣上增加的絕干質(zhì)量均在(1.4±0.3)mg/cm2范圍內(nèi))。這些結(jié)果表明,PectinexSmash對生物膜形成的預(yù)防性能并不是由于其中的非酶成分造成的。
2.5 PectinexSmash劑量的影響
在實(shí)驗(yàn)進(jìn)行的190h期間,未觀察到4個(gè)生物反應(yīng)器中的細(xì)菌總數(shù)有顯著差異。24h后,無酶處理和酶用量為0.0001%的PectinexSmash處理中,肉眼可明顯觀察到生物反應(yīng)器中試樣上形成的生物膜。酶用量為0.001%和0.01%的生物反應(yīng)器中,48h后才能肉眼觀察到試樣上的生物膜。無酶處理和用量為0.0001%的PectinexSmash處理中,生物反應(yīng)器試樣上的生物膜絕干質(zhì)量很接近,表明PectinexSmash用量為0.0001%時(shí)不影響生物膜的生成(見圖4)。PectinexSmash用量為0.001%時(shí)可觀察到酶對生物膜積累的預(yù)防效果一般,使試樣上生物膜絕干質(zhì)量降低了50%。然而,酶用量為0.01%時(shí),PectinexSmash顯著阻礙了生物膜的形成,因?yàn)榇擞昧肯略嚇由系纳锬そ^干質(zhì)量為無酶處理時(shí)的1/5。因此,PectinexSmarsh在用量為0.01%和0.1%時(shí)的作用效果相當(dāng)。
2.6 主要酶成分的鑒定
如先前的實(shí)驗(yàn)所述,由于PectinexSmash性能最佳,故進(jìn)行了更多的實(shí)驗(yàn)以進(jìn)一步證實(shí)它對未過濾水(含有纖維、細(xì)小纖維和填料,這些物質(zhì)會影響生物膜的形成)中生物膜形成的阻止效果。PectinexSmash是一種從曲霉屬真菌中提取的產(chǎn)品,具有較寬的酶活性范圍,因?yàn)樗鼈冎g含有各種果膠活性物質(zhì)——果膠甲基酯酶。為鑒定對抑制生物膜形成起主導(dǎo)作用的活性物質(zhì),在B10反應(yīng)器中研究了2種含有PectinexSmash活性成分的相關(guān)產(chǎn)品,即PectinexUltraSP(從曲霉屬真菌中提取的果膠酶混合物)和Novoshape(主要活性酶為從曲霉屬真菌中提取的果膠甲基酯酶)。圖5顯示了這些酶產(chǎn)品的作用效果。圖5可知,PectinexUltraSP對生物膜的形成沒有影響,而PectinexSmash處理對控制生物膜的形成是有效的,試樣上生物膜的絕干質(zhì)量為對照實(shí)驗(yàn)的1/3。Novoshape處理結(jié)果表明,試樣上生物膜的絕干質(zhì)量為對照實(shí)驗(yàn)的1/4。PectinexSmash和Novoshape制劑中都含有果膠甲基酯酶。因此可得出結(jié)論,果膠甲基酯酶是造成PectinexSmash具有預(yù)防和控制生物膜功能的主要酶,或至少是其中的一種酶。
3討 論
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,研究的17種酶產(chǎn)品中,PectinexSmash及Novoshape是預(yù)防生物膜形成的最有效方法(它們都主要由果膠甲基酯酶組成)。PectinexSmash是一種果膠酶活性成分的混合物,Novoshape是一種微生物果膠甲基酯酶溶液(PME,E.C.1.1.11)。酯酶的編碼基因來自曲霉屬真菌,可轉(zhuǎn)移到食品級微生物-米曲霉的分子鏈中,從而用于工業(yè)生產(chǎn)。Novoshape制劑的活性為10PEU/mL,最佳溫度約50℃(數(shù)據(jù)由制造商提供)。這種酶屬于碳水化合物酯酶屬,能催化甲基酯基團(tuán)的水解,對果膠底物有高度選擇性,此特性在食品工業(yè)和植物學(xué)中應(yīng)用廣泛。目前,生物膜多糖的組成還不完全清楚,但關(guān)于浮游生物的胞外聚合物(EPS)和少量生物膜EPS的現(xiàn)有數(shù)據(jù)表明,它們的一些單體與植物細(xì)胞壁物質(zhì)完全相同或相似。實(shí)際上已有報(bào)道稱,一些細(xì)菌EPS是酶混合物(不是來自細(xì)菌)的基質(zhì)。
Orgaz等人在關(guān)于生物膜去除的案例研究中得出結(jié)論,對于熒光假單胞菌生物膜的去除,由綠色木霉菌(與果膠甲基酯酶同屬)產(chǎn)生的果膠酯酶可能使生物基質(zhì)中的多糖去乙?;?,使其更松軟并具有更多孔隙。許多微生物EPS具有不同的取代基,如縮酮連接的丙酮酸酯基或酯連接的乙?;u;?,尤其是醋酸酯的去除能顯著影響多糖的物理性質(zhì)。一種取代基的去除會影響EPS的物理特性,如乙?;貏e是醋酸酯。
通過分泌各種酶,一些真菌可降解復(fù)雜的植物細(xì)胞壁物質(zhì)。這種多功能性使得商品多糖降解酶混合物在多種領(lǐng)域廣泛應(yīng)用,如水果加工或廢水處理。它們還能用于降解細(xì)菌生物膜基質(zhì)或預(yù)防和控制造紙廠廢水管道系統(tǒng)內(nèi)生物膜的形成。因?yàn)镋PS的多相性,酶混合物對生物膜的有效降解是必需的。
高效酶能夠去除浸沒在水內(nèi)的生物膜,這種方法可以與殺菌劑一起使用,本研究為這種方法的使用奠定了基礎(chǔ)。酶能生物降解且毒性低,它的使用能減少殺菌劑的使用,因而對環(huán)境友好且具有經(jīng)濟(jì)優(yōu)勢。